微生物污染會對體外培養細胞的正常生存、生長及功能活動造成極大干擾，嚴重的可致細胞死亡。同時，實驗結果的準確性和可靠性也大打折扣。所以，保持細胞生存環境無微生物污染是體外實驗的前提條件。良好的無菌操作可大大降低細胞培養中的微生物污染風險。那么你知道什么是支原體污染嗎？讓我們一起來看看吧！
 

　　支原體是介于細菌和病毒之間能獨立生活的最小微生物，無細胞壁，形態多變，大小介于0.2 ~ 2 μm之間，多吸附在細胞表面或散在于細胞之間。不同支原體的生物學性狀有很大差別，一般對熱敏感，對青霉素普遍有抗藥性。由于支原體無致死細胞毒性且可與細胞長期共存，故培養基一般不發生渾濁，無明顯變化，或有微細變化卻由于傳代和換液而被緩解。除了細胞培養狀況不佳，采用常規顯微鏡并不容易觀察支原體污染，其檢出需借助熒光染色、PCR、ELISA、免疫染色、放射自顯影術、微生物學分析等方法，其中采用核酸熒光染料進行DNA染色是相對簡單和可信的方法之一。
 

　　當進行熒光染色時，在40×或100×物鏡下支原體可被顯示為細胞質上明確的微粒或絲狀染色，一般大小、性質一致，此時同樣被亮染的培養細胞的細胞核可作為陽性對照。確定是否存在支原體污染需盡可能多地觀察染色樣本，因為不是所有培養的細胞都會被污染。
 

　　用熒光染色法進行支原體檢測時，培養物的細胞碎片可能會造成假陽性結果，但細胞碎片不會出現清晰的點狀或絲狀支原體形態。若仍不能確認，可吸取適量待檢培養基與指示細胞(為已明確無支原體污染且是支原體的適宜宿主，同時生長良好，有足夠的細胞質以顯示粘附的支原體，如MDCK細胞)共培養，然后熒光染色來觀察指示細胞表面是否有支原體，從而避免誤判。
 

　　運用熒光染色法有時會觀察到細胞質存在均勻亮染，這可能是由RNA引起的，這類熒光會逐漸變暗，可將染色樣本干燥避光保存后在第2天觀察。如果對熒光檢測的結果存在懷疑，可重復檢測或采用其他方法再次檢測。
 

　　支原體可黏附在宿主細胞表面，從細胞膜獲取脂質和膽固醇，造成細胞膜損傷。支原體能抑制細胞代謝和生長，改變核酸合成，影響細胞抗原性，導致染色體畸變，干擾病毒復制以及具有類似病毒的作用。不同細胞對支原體的感受性和反應存在差異。
 

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