簡介

獲得高質量和完整的 RNA 是很多分子生物學實驗中最重要的一步，當前應用最多的是 Trizol/氯仿萃取的方法。

原理

1、４℃ 預冷離心機;

2、取出培養皿，在超凈臺中去除培養基，按照每 1x107 細胞加入 １ｍL Trizol 試劑，用槍頭吹打充分裂解細胞;

3、將細胞裂解液轉移到 1.5 mL 無 RNA 酶的 EP 管中，向每個 EP 管中加入（1/5 Trizol 體積的）200 μL 氯仿，上下翻轉充分混合后，室溫靜置 10 分鐘，使核酸蛋白復合物wan全解離;

4、在 ４℃ 下 12000 g 離心 15 分鐘;

5、離心后，將上層水相（約 1/2 Trizol體積）小心轉移到一個新的 EP 管，加入等體積異丙醇，震蕩后室溫靜置 5-10 分鐘，然后 12000 g 4℃ 離心 15 分鐘，棄上清保留沉淀;

6、加入1 mL 75％ 乙醇清洗并沉淀 RNA，12000 g 離心 10 分鐘;

7、棄上清，并重復上述操作一次;

8、棄上清，在超凈工作臺中打開 EP 管蓋，風干 5-10 分鐘，不需wan全干燥;

9、視沉淀的量，加入 10-30 μL RNase-Free 的 DEPC 雙蒸水中;

10、待沉淀溶解后，用 nanodrop 測定其濃度和純度并作標記，進行下游實驗，多余的RNA 保存于 -80℃ 冰箱。

用途

RT-PCR、分子克隆、Northern-Blot、RNA 體外轉錄與翻譯等。

材料與儀器

【材料】：細胞；Trizol 試劑；氯仿；異丙醇；75％ 乙醇（使用 RNase-Free 水配制）；RNase-Free 水。

【物品及儀器】：1.5 ml EP管（RNA-free），大，中，小號槍頭（RNA-free），移液器，渦旋振蕩器，高速冷凍離心機，超凈工作臺。

步驟

1、４℃ 預冷離心機;

2、取出培養皿，在超凈臺中去除培養基，按照每 1x107 細胞加入 １ｍL Trizol 試劑，用槍頭吹打充分裂解細胞;

3、將細胞裂解液轉移到 1.5 mL 無 RNA 酶的 EP 管中，向每個 EP 管中加入（1/5 Trizol 體積的）200 μL 氯仿，上下翻轉充分混合后，室溫靜置 10 分鐘，使核酸蛋白復合物wan全解離;

4、在 ４℃ 下 12000 g 離心 15 分鐘;

5、離心后，將上層水相（約 1/2 Trizol體積）小心轉移到一個新的 EP 管，加入等體積異丙醇，震蕩后室溫靜置 5-10 分鐘，然后 12000 g 4℃ 離心 15 分鐘，棄上清保留沉淀;

6、加入1 mL 75％ 乙醇清洗并沉淀 RNA，12000 g 離心 10 分鐘;

7、棄上清，并重復上述操作一次;

8、棄上清，在超凈工作臺中打開 EP 管蓋，風干 5-10 分鐘，不需wan全干燥;

9、視沉淀的量，加入 10-30 μL RNase-Free 的 DEPC 雙蒸水中;

10、待沉淀溶解后，用 nanodrop 測定其濃度和純度并作標記，進行下游實驗，多余的RNA 保存于 -80℃ 冰箱。

注意事項

1、過程中需佩戴口罩和新手套，對臺面以及周圍環境進行滅酶處理，盡量在超凈臺中進行操作；

2、使用無 Rnase 的塑料制品和槍頭，避免交叉污染。

3、溶液配制應使用無 Rnase 的水，（將水加入到干凈的玻璃瓶中，加入 DEPC 至終濃度為 0.1%（V/V)，放置過夜，高壓滅菌。注：DEPC 有致癌之嫌，須小心操作）。

4、Trizol 裂解液非常危險，因小心避免濺到身上，臺面上的 Trizol 要及時清理干凈。

常見問題

RNA 得率過低：

1.使用更有效的破碎/勻漿方法。如液氮搗碎、酶消化破壁、電動勻漿器勻漿；

2.更換抽提試劑；

3.核酸濃度低時，采用低溫沉淀，并延長沉淀時間；

4.增加細胞。

RNA 質量不高：

1、取上層水相時求多，吸到了下層有機相；

2、清洗不干凈。

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