一、固定處理的作用

組織固定是生物學實驗的關鍵步驟，通過化學試劑（如4%多聚甲醛、乙醇）快速終止細胞代謝、固化結構并抑制微生物降解。然而，固定處理可能改變樣本的理化性質，導致后續染色失敗。固定并非wanquan阻斷染色，而是需針對性優化條件。

二、固定導致染色失敗的四大原因

1. 抗原決定簇被封閉

機制：甲醛等交聯型固定劑使蛋白質間形成亞甲基橋，掩蓋抗體識別位點（抗原表位）。

案例：細胞膜表面標志物（如CD3、CD20）染色信號減弱。

2. 學交聯破壞染色靶點

交聯效應：固定劑使DNA-蛋白質、脂質-蛋白質交聯，影響熒光染料（如DAPI）或探針的結合。

典型表現：核酸染料染色模糊，原位雜交信號丟失。

3. 分子結構過度硬化

空間位阻：過度固定導致組織過度硬化，抗體或染料難以穿透致密結構（如骨髓、角質層）。

現象：組織中心區域染色不均，邊緣深染而內部無信號。

4. 內源性物質干擾

副產物影響：醛基固定劑可能產生自發熒光，干擾熒光顯微鏡觀察。

實例：甲醛固定后，綠色自發熒光掩蓋FITC標記信號。

三、《破解固定后染色難題的五大策略》

四、經典案例：免疫組化染色失敗后的挽救方案

問題描述：小鼠肝臟石蠟切片經甲醛固定后，AFP（甲胎蛋白）抗體無信號。

診斷步驟：

排除一抗失效：Western blot驗證抗體活性。

檢測抗原修復效果：對比熱修復與未修復切片。

解決方案：

改用高壓熱修復（121℃檸檬酸緩沖液處理2分鐘）。

一抗孵育時間延長至過夜（4℃）。

五、總結

固定處理與染色并非不可調和的矛盾，關鍵在于平衡結構保存與表位暴露。通過精準控制固定條件、針對性抗原修復及試劑優化，即使是深度固定的樣本也能獲得清晰的染色結果。建議初次實驗時設置梯度固定時間組，篩選最佳處理窗口。